Ảnh hưởng của dịch nghiền hữu cơ đến cảm ứng tạo chồi và khả năng thay thế agar bằng một số vật liệu vô cơ ở giai đoạn tạo rễ của cây cúc cổ Sơn La (Chrysanthemum sp.)
,
,
,
,
,
,
&
Article Sidebar
Main Article Content
Tóm tắt
Cúc cổ Sơn La (Chrysanthemum sp.) là giống hoa cảnh thân gỗ, dạng bụi, có giá trị cao về cảnh quan và kinh tế, phù hợp trồng chậu và tạo dáng bonsai. Tuy nhiên, phương pháp nhân giống truyền thống của giống này còn hạn chế về hệ số nhân và chất lượng cây giống. Nghiên cứu được thực hiện nhằm nhân chồi, tạo rễ in vitro cho cây cúc cổ Sơn La và đánh giá khả năng thay thế agar bằng một số vật liệu vô cơ trong giai đoạn tạo rễ. Thí nghiệm được tiến hành trên môi trường MS (Murashige và Skoog) bổ sung 30 g/L sucrose qua hai giai đoạn. Ở giai đoạn nhân chồi, các đoạn thân được nuôi cấy trên môi trường MS có agar 8 g/L với bốn nghiệm thức gồm BAP 1,5 mg/L, dịch nghiền khoai tây 10% (w/v), dịch nghiền cà rốt 10% (w/v) và nước dừa 10% (v/v). Sau 42 ngày nuôi cấy, môi trường bổ sung 6-benzylaminopurine (BAP) 1,5 mg/L cho số chồi và số lá cao nhất (5,01 chồi/mẫu và 33,3 lá/mẫu), trong khi nước dừa 10% cải thiện đáng kể chiều cao chồi (4,62 cm). Ở giai đoạn tạo rễ, các đoạn thân cúc cổ Sơn La in vitro được cấy trên agar 8 g/L (đối chứng) và các vật liệu vô cơ gồm lava đỏ, lava đen, masato và perlite (30 g/bình kết hợp 30 mL môi trường lỏng MS bổ sung 1 mg/L IBA). Sau 42 ngày, perlite cho tỷ lệ ra rễ 93%, tương đương agar, đồng thời đạt chiều dài rễ lớn hơn (8,45 cm). Nhìn chung, perlite có tiềm năng thay thế agar trong giai đoạn tạo rễ in vitro cúc cổ Sơn La, góp phần nâng cao chất lượng cây con phục vụ sản xuất.
Article Details
Tài liệu tham khảo
Chen, Q., Gao, K., Pan, B., Wang, Y., Chen, L., Yu, J., Wang, L., Fan, Y., Li, H., & Huang, C. (2024). Construction of optimal regeneration system for Chrysanthemum ‘11-C-2’ stem segment with buds. Plants 13(17), 2403. https://doi.org/10.3390/plants13172403.
Clapa, D., & Fira, A. (2008). The use of perlite as support in liquid media for the in vitro rooting of some horticultural species. Bulletin UASVM Horticulture 65(1), 460-463.
Clapa, D., Fira, A., & Joshee, N. (2013). An efficient ex vitro rooting and acclimatization method for horticultural plants using float hydroculture. HortScience 48(9), 1159-1167.
Eisa, E. A., Tilly-Mándy, A., Honfi, P., Al-Selwey, W. A., & Gururani, M. A. (2022). Chrysanthemum: A comprehensive review on recent developments on in vitro regeneration. Biology 11(12), 1774. https://doi.org/10.3390/biology11121774.
Firgiyanto, R., Rohman, F., Sjamsijah, N., Prasetyo, H., & Siswadi, E. (2024). In vitro growth of different chrysanthemum cultivars on Murashige and Skoog medium modified with some organic additives. IOP Conference Series: Earth and Environmental Science 1338(1), 012006. https:// doi.org/10.1088/1755-1315/1338/1/012006.
Girsang, R., Armaniar., & Refnizuida. (2019). In vitro propagation of Chrysanthemum (Chrysanthemum indicum L.) with benzyl amino purine and naphthalene acetic acid supplementation. International Journal of Advanced Research 7(11), 361-366. https://doi. org/10.21474/IJAR01/10016.
Gomez, K. A. & Gomez, A. A. (1984). Statistical procedures for agricultural research (2nd ed.). New York, USA: John Wiley and Sons.
Hussain, S., Chang, J., Li, J., Chen, L., Ahmad, S., Song, Z., Zhang, B., & Chen, X. (2025). Multifunctional role of cytokinin in horticultural crops. International Journal of Molecular Sciences 26(3), 1037. https://doi.org/10.3390/ijms26031037.
Jesionek, A., Kokotkiewicz, A., Włodarska, P., Filipowicz, N., Bogdan, A., SzreniawaSztajnert, A., Zabiegała, B., Buciński, A., & Łuczkiewicz, M. (2016). In vitro propagation of Rhododendron tomentosum – an endangered essential oil bearing plant from peatland. Acta Biologica Cracoviensia Series Botanica 58(2), 29- 43. https://doi.org/10.1515/abcsb-2016-0019.
Khan, A., Bashir, A., Erum, S., Khatak, J. Z. K., & Muhammad, A. (2021). Effects of 6-benzylaminopurine and indole-3-acetic acid on growth and root development of banana explants in micropropagation. Sarhad Journal of Agriculture 37(1), 9-13. https://doi.org/10.17582/journal.sja/2021/37.1.9.13.
Mehbub, H., Akter, A., Akter, M. A., Mandal, M. S. H., Hoque, M. A., Tuleja, M., & Mehraj, H. (2022). Tissue culture in ornamentals: Cultivation factors, propagation techniques, and its application. Plants 11(23), 3208. https:// doi.org/10.3390/plants11233208.
Nguyen, T. A. (2024). In vitro mutation induction in Son La ancient chrysanthemum (Chrysanthemum sp. “Cuc Son La”) (Unpublished Bachelor’s thesis). Nong Lam University, Ho Chi Minh City, Vietnam.
Tran, N. C., Chat, N., Y, D. N., Tran, L. Q., & Binh, T. T. K. (2023). Effects of organic extracts on in vitro shoot and root formation of Anoectochilus setaceus Blume. Journal of Agriculture and Rural Development 2, 53-60.
Trigiano, R. N., & Gray, D. J. (Eds.). (2011). Plant tissue culture, development, and biotechnology. Florida, USA: CRC Press.
Yong, J. W. H., Ge, L., Ng, Y. F., & Tan, S. N. (2009). The chemical composition and biological properties of coconut (Cocos nucifera L.) water. Molecules 14(12), 5144-5164. https://doi.org/10.3390/ molecules14125144.